任务1：实验动物捉拿与固定
任务2：麻醉方法及麻醉效果判断
任务3：剪毛、颈部切开与分离
任务4：气管分离与插管
任务5：哺乳动物手术操作一
哺乳类动物常用手术操作技术
目的与要求
掌握常用仪器、手术器械的名称和使用方法；
掌握家兔捉拿、麻醉、固定、切口、气管分离和插管等基本技术。
一、动物基本操作技术
1.切口与止血
用哺乳动物进行实验时，在做皮肤切口之前，应先将预定部位及其周围的长毛剪去。然后选好确切的切口部位和范围，必要时做出标志。切口的大小要适当，既要便于实验操作，也不可过大。术者先用左手拇指和另外四指将预定切口上端两侧的皮肤绷紧固定，右手持手术刀，以适当的力量，一次全线切开皮肤和皮下组织，直到肌层表面。
在手术过程中，必须及时注意止血。微血管渗血，用温热盐水纱布轻压即可止血。干纱布只用于吸血，不可用以揩擦组织，以防组织损伤和血凝块脱落。较大血管出血，需先用止血钳将出血点及其周围的少许部分组织一并夹住，然后用线结扎。更大血管出血，或血管虽不很大，但出血点较多且比较集中(如肌肉的横断面)，最好用针线缝合局部组织，进行贯穿结扎，以免结线松脱。大动脉破裂出血时，切不可用有齿的镊子或血管钳直接夹住管壁，而应先用纱布压住出血部位，吸干血后，小心打开纱布，观察出血点位置，迅速用手指捏住动脉破裂处，用动脉夹夹住血管近心端，再作进一步处理。
开颅过程中如果颅骨出血，可用湿纱布吸去血液后，迅速用骨蜡涂抹止血。如遇硬脑膜上的血管出血，可结扎血管断头，或用烧灼器封口。如果是软脑膜出血，应该轻轻压上止血海绵。
在实验间歇期间，应将创口暂闭合，或用温盐水纱布盖好，以防组织干燥和体内热量散失。
2.肌肉、神经与血管的分离
分离肌肉时，应该用止血钳在整块肌肉与其他组织之间，顺着肌纤维方向，将肌肉一块块地分离。决不能在一块肌肉的肌纤维间任意穿插。如果在肌肉纤维间操作，不仅容易损伤肌纤维而引起出血，并且也很难将肌肉分离。若必须将肌肉切断，应先用两把止血钳夹住肌肉(小块或薄片肌肉也可用两道丝线结扎)，然后在两止血钳间切断肌肉。
神经和血管都是比较娇嫩的组织，因此在剥离过程中要耐心、仔细、动作轻柔。切不可用带齿的镊子进行剥离，也不许用止血钳或镊子夹持，以免其结构或机能受损。在剥离粗大的神经、血管时，应先用蚊式止血钳将神经或血管周围的结缔组织稍加分离，然后用大小适宜的止血钳将其从其周围的结缔组织中游离出来。游离段的长短，视需要而定。在剥离细小的神经或血管时，要特别注意保持局部的自然解剖位置，不要把结构关系弄乱，同时需要用眼科小镊子或玻璃针轻轻地进行分离。
剥离完毕后，在神经或血管的下方穿以浸透生理盐水的缚线(根据需要穿一根或两根)，以备刺激时提起或结扎之用。然后盖上一块浸以生理盐水的棉絮或纱布，以防组织干燥，或在创口内滴加适量温热(37℃左右)石蜡油，使神经浸泡其中。
二、颈部手术
颈部手术主要以兔、狗、猫、大白鼠、豚鼠为实验对象。将动物仰卧位固定于手术台上，然后进行实验。
1.颈部切开
剪去颈前皮肤上的毛。用手术刀在喉头与胸骨上缘之间沿颈腹正中线作一切口。切口的长度：大白鼠或豚鼠为2.5～4 cm，兔、猫为5～7 cm，狗为250px，用止血钳分离皮下结缔组织，然后将切开的皮肤向两侧拉开，可见到颈部用3条浅层肌肉：
(1)胸骨乳突肌 起自胸骨，斜向外侧方头部颞骨的乳突处，在狗称为胸头肌。左右胸骨乳突肌呈“V”型斜向分布。
(2)胸骨舌骨肌 起自胸骨，止于舌骨体，位于颈腹正中线，左右两条平行排列，覆盖于气管腹侧面。
(3)胸骨甲状肌 起自胸骨和第一肋软骨，止于甲状软骨后缘正中处。
2.气管切开及气管插管术
气管切开术是哺乳类动物急性实验中常作的手术。一方面切开气管和插入气管插管可保证呼吸通畅；另一方面为实验要求做准备。
气管位于颈部正中，胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌背侧。分开肌肉，用弯形止血钳沿气管边缘向对侧和向上下两侧方向，将气管周围组织分离。气管背侧为食管，注意止血钳勿过深，防止损伤食管及周围小血管。从甲状软管向下分离气管约2～3 cm长，穿一较粗线于其下。左手提起线，右手持手术剪刀于两软骨环间，剪一“┻”形切口。横切口约为气管圆周的一半，纵切口约为0.5～0.7 cm。再将气管套管由切口向胸骨端插入，并用线结扎好。第一次结扎套管于气管，然后将线于套管分叉处再结扎一次，以防止气管套管脱落。注意插气管时，动作轻柔，若见气管内有血液，应取出套管擦尽血液；如动物气道内有呼噜声，并有呼吸困难时，可用连有细胶管的注射器进行抽吸。然后再重新插管，保证气道畅道。
颈部手术及其他部位手术一样，应动作轻柔，力戒粗暴操作。不能用止血钳夹血管、神经、皮肤等组织。手术中注意及时止血，若是微血管出血，可用温湿生理盐水纱布压迫止血；小血管出血可用止血钳夹住出血部位止血；较大血管出血，则应结扎血管，并报告老师。
3.颈部神经、血管分离的基本方法
首先应了解兔颈部神经、血管分布。
神经和血管都是比较娇嫩的组织，因此在剥离的过程中应细心，动作要轻柔，切不可用有齿镊子进行剥离，也不可用止血钳或镊子夹持，以兔其结构和机能受损。
剥离颈部较粗大神经和血管时，先用止血钳将神经或血管周围的结缔组织稍加分离，然后在神经或血管附近结缔组织中插入大小适合的止血钳，顺着神经或血管走行方向扩张止血钳，逐渐使其周围结缔组剥离。分离细小神经或血管时，要特别注意保持局部的自然解剖位置。不要把结构关系弄乱。同时，需用玻璃分针轻轻地进行分离，分离组织时的用力方向应与神经或血管的走行方向一致。
分离完毕，在神经或血管的下面穿过浸有生理盐水的细线(根据需要穿一根或两根)，以备刺激时提起或结扎之用。然后用一块浸有温热生理盐水的纱布或棉花盖在切口组织上，经常保持组织湿润。
4.颈外静脉的分离与插管
在急性实验中，颈外静脉插管常用于注射各种药物、取血、输液和测量中心静脉压。
兔和狗的颈外静脉很粗大，是头颈部的静脉主干。颈外静脉分布很浅，在颈部皮下胸骨乳突肌的外缘。在胸骨切迹至甲状软骨连线的中点，向两端切开皮肤，分离时，用手指在颈皮肤外面向上顶起，即可看到呈暗紫红色的颈外静脉，用钝头止血钳或玻璃分针沿血管走行方向，将静脉周围的结缔组织轻轻分离，如图6－20。
颈外静脉插管前，首先准备长短适当、内径为0.1～0.2 cm的塑料管或硅胶管，插入端塑料管要剪成斜面，另一端连接输液或静脉压测量装置。插管时先用动脉夹夹住静脉近心端，待静脉充盈后再结扎远心端。用眼科剪在静脉上靠远心端结扎线处，呈45o角剪一马蹄形小口，约为管径的三分之一或二分之一，插入导管。将备用线打一个结，取下动脉夹，把导管慢慢向右心室方向送至所需长度。测量中心静脉压时，兔需插入约5 cm，狗插入约15 cm，此时导管口在上腔静脉近右心房入口处，可见到压力随呼吸明显波动，结扎固定导管。如果颈处静脉用作注射输液等，导管一般送入2～3 cm即可。
兔选用颈外静脉较好，狗则多用股静脉。
5.颈总动脉的分离与插管
在急性实验中，颈总动脉插管作测量动脉血压或放血用。
颈总动脉位于气管外测，其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。分离两条肌肉之间的结缔组织，可找到呈粉红色较粗大的血管，用手指触之有搏动感，即为颈总动脉。
颈总动脉与颈部神经被结缔组织膜束在一起，称颈部血管神经束。用左手拇指和食指抓住颈皮和颈肌，以中指顶起外翻，右手持蚊式止血钳或玻璃分针，顺血管神经的走行方向分离出颈总动脉。此时应注意：颈总动脉在甲状腺附近有一较大的侧支，为甲状腺前动脉，分离时勿将其切断。分离过程中，应不时地用生理盐水湿润手术野，并拭去附近的血液。为了便于插管或作颈总动脉加压反射等操作，颈总动脉应尽量分离得长些；大白鼠、豚鼠2～3 cm，兔3～4 cm，狗4～5 cm。
插管前，先分离所需动脉3～4 cm长，其下穿2根线。一根将远心端结扎。在近心端用动脉夹夹住，在靠近远心端结扎处剪一斜形切口用左小手指垫于血管下，右手将动脉插管顺血管切口插入1－37.5px，再用另一根线扎牢插管，小心取走动脉夹后，可作动脉血压测定、放血、采血等实验操作。注意：分离动脉时，不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。未扎紧动脉插管前，不要松开脉夹。进行手术过程中，常用生理盐水湿润并拭去附近的血液。插入前，套管内应预先充满5%枸橼酸钠溶液，排除套管和压力换能器仓内的空气。
6.颈部神经的分离
(1)颈部迷走、交感、减压神经的分布情况
颈部神经的分布因动物种类而异：
兔：在气管外侧，颈总动脉与三根粗细不同的神经在结缔组织的包绕下形成血管神经束。其中最粗者呈白色为迷走神经；较细者呈灰白色，为颈部交感神经干，交感神经干有到心脏去的分支；最细者为减压神经，属于传入性神经(见图6－22)。其神经末稍分布在主动脉弓血管壁内。减压神经一般界于迷走和交感神经之间，但其位置常有变异，且变异率很大。
猫：迷走神经与交感神经并列而行，粗大者为迷走神经，较细者为交感神经，减压神经并入迷走神经中移行。
狗：在颈总动脉背侧仅见一粗大的神经干，称为迷走交感神经干。迷走神经的结状神经节与交感神经的颈前神经节相邻。迷走神经于第一颈椎下面进入颈部，与交感神经干紧靠而行，并被一总鞘所包，联合而成迷走交感神经干。但进入胸腔后，迷走神经与交感神经即分开移行。
(2)家兔颈部神经的分离方法 用左手拇指和食指捏住颈部皮肤与肌肉，用中指顶起外翻，即可见到与气管平行的颈部神经血管束。可根据神经的形态、位置、走行方向等特点仔细辨认。然后，右手用玻璃分针细心顺着神经、血管的走行方向分离开颈部神经血管束的包膜，即可见到搏动的颈总动脉和与之伴行的较粗的迷走神经，较细的交感神经和最细的减压神经(在兔此神经独成一束)。由于减压神经最细、容易损伤。故应用玻璃分针首先将其分离出来，穿线打虚结备用。然后，再用同样的方法依次分离出交感、迷走神经。
(3)颈部隔神经的分离方法 切开并分离颈部皮肤，可见气管和胸骨乳突肌，胸骨乳突肌的外侧有紧贴于皮下的颈外静脉。用止血钳在颈外静脉和胸骨乳突肌之间向深处分离，当分离到气管边缘时，可见较粗的臂丛神经从后外方行走，在臂丛神经内侧有一条较细的隔神经，它约在颈部下1/5处横跨臂丛并与之交叉，向内、后走行。辨清膈神经后，用玻璃分针小心地将膈神经分出1～2 cm，并在神经下穿一线备用。为使电位记录幅度较大，可小心剥去神经干周围的结缔组织膜。
三、胸部手术
1.胸部切开
将兔麻醉后仰卧固定于兔床上，剪毛，沿胸骨正中线切开皮肤直至剑突上，可见胸部肌肉及胸骨。在胸腔的外侧和腹侧壁覆盖着胸肌。该肌分为浅、深两层。
(1)胸浅肌很发达，包括两部分：胸大肌位于后部；胸薄肌位于前部。他们起自胸骨柄，向下至侧面，止于肱骨的内侧面。
(2)胸深肌比胸浅肌厚，也分为两部分，它们直接起自胸骨，向前上方，一部分止于锁骨，另一部分至锁骨下肱骨上缘。
在正中线左缘1～2 mm处上自第二肋骨下至剑突上切开胸肌，可见肋间肌。肋间肌位于肋骨间隙处，分成内、外两层，都是短的肌束，参与吸气、呼气运动。
沿胸骨左缘用手术刀刀刃向上挑断2~5肋软骨，或用剪刀自肋间斜插入胸腔剪断肋软骨。然后用小拉钩或小开胸器牵开胸壁，这时可见心包及跳动的心脏。
注意事项：①为做好开胸切口，首先要求距正中线不得太远，以免伤及胸内动脉；②当向下剪断肋骨时，不要伤及膈肌；③放置拉钩时，在胸壁切口左侧缘垫湿生理盐水纱布防止造成气胸；④肋间动脉分支走行于肋间肌、肋骨和胸膜之间，手术中应避免损伤它；⑤分离神经需用玻璃分针，避免金属器械碰神经。
2.冠状动脉结扎术
(1)兔心脏的血液供应：兔心脏本身所需要的血液来自左右冠状动脉。冠状动脉起自主动脉根部，主动脉瓣前方的左右两壁处。其中左冠状动脉主干位于动脉圆锥和左心耳之间，长度一般不超过3mm。
左冠状动脉下行至冠状沟后即分为三个主要分支。①前降支：下行至心腹侧面、左右心室之间的前纵沟。降支较短，止于前纵沟上1/3处占61%；到达中1/3处者占34%。根据降支发出分支的差异，又分为两型。其中先发出圆锥支为第一型，先发出左室支为第二型。前者前降支细小，而左室前支粗大。左室前支下行至心尖附近。②左旋支：在冠状沟内转向心脏背侧，至心脏背面变细，然后离开冠状沟向下沿前纵沟下行。除发出数个短的左室前支和左室后支及左心房支外，在前面还发出一个粗大的左室支，此支起点在相当于左心耳中1/3处，以单支或双支呈反“S”形走向心尖，供应范围包括左心室前后壁及乳头肌。这是兔冠状动脉的一个特点。③左室支：家兔冠状动脉左室支由前阵支分出向下行走于浅层心肌内，与左缘静脉伴行不紧密，约经左心耳下缘中点下行，经心外膜可看到通过此部位外膜有明显隆起。
(2)手术方法
用镊子仔细提起心包膜，用眼科剪小心将其前部剪开，找到前降支及左室支，有的兔前降支明显；有的前降支不明显，左室支粗大。用包裹湿纱布的左手食指，轻轻将心脏向左方翻动一个角度，此时可见一穿行于浅层心肌下、纵行到心尖的较粗大的反“S”型血管，即为冠状动脉左室支。
用止血钳将左心耳轻轻提起，用小号持针器持眼科圆形弯针，在冠状动脉前降支根部下约1 cm处左侧(或左室支管壁下)刺入，结扎动脉。为减少侧支循环，增加心肌缺血、心肌梗死范围，可在结扎线下约0.5 cm处再穿线进行第二次冠脉结扎。当结扎完毕后可迅速见到心室前壁、心尖区心肌颜色出现变化、心肌收缩减弱。
注意事项：剪心包膜时不要弄破胸膜。
四、腹部手术
麻醉动物，仰卧位固定于手术台上。
1.胆总管插管
沿剑突下正中切开长约10 cm的切口，打开腹腔，沿胃幽门端找到十二指肠，于十二脂肠上端背面可见一黄绿色较粗的肌性管道，则为胆总管。
在近十二指肠处仔细分离胆总管，并在其下方置一棉线，于靠近十二指肠处的胆总管上剪一小口，向胆囊方向插入细塑料管结扎固定。塑料管插入胆总管后，立即可见绿色胆汁从插管流出，如不见胆汁流出，则可能是未插入胆总管内，应取出重插。
注意事项：插管应基本与胆总管相平行，才能使之引流通畅。
2.膀胱与输尿管插管
常用狗、兔等作膀胱或输尿管插管手术。
(1)膀胱插管 于耻骨联合上方沿正中线作4～5 cm长切口，再沿腹白线切开腹腔。暴露膀胱，将其上翻，结扎尿道。在膀胱顶部血管较少的部位剪一小口，插入膀胱插管，用线将切口处的膀胱壁结扎固定于插管上。
注意事项：膀胱插管的另一端尿液出口处于应低于膀胱水平。
(2)输尿管插管 动物手术基本同膀胱插管。
将膀胱翻至体外后，在膀胱底两侧辩认输尿管(图6－24)，在输尿管靠近膀胱处，轻轻分离周围组织，从输尿管下方穿线打一松桔，用眼科剪于输尿管上剪一小口，将充满生理盐水的细塑料插管向肾脏方向插入，扎紧松结，两侧输尿管均同样插入插管，连接一Y形管引出体外（也可插一侧输尿管）。此时可见尿液从插管中慢慢逐滴流出。将尿滴滴在与记滴器上，记滴器转入BL－410系统记录尿滴数。
注意事项：①插管要插入输尿管管腔内，不要插入管壁肌层与黏膜之间；②插管方向应与输尿管方向一致，勿使输尿管扭转，以妨碍尿液的流出；③辨认输尿管需与输精管加以区别。④手术完毕后，用温热的(38℃左右)生理盐水将腹部切口处盖住，以保持腹腔的温度。
五、股部手术
麻醉动物，仰卧位固定于手术台上。
1.股动脉、静脉和股神经的分离
股部手术是为了分离股动、静脉并进行插管，供放血、输血、输液及注射药物所用，多用于兔、狗和猫，其他小动物因插管难度较大故少用。其步骤如下：
仰卧固定，在股三角剪毛。用手触摸股动脉搏动，沿动脉走向在皮肤上作4～5 cm长切口。用止血钳分离皮下组织及筋膜，可见到股动、静脉和神经，三者的位置由外向内依次为股神经、股动脉、股静脉，股动脉的位置在中间靠后，恰被股神经和股静脉所遮盖(图6－25)。用蚊式止血钳小心将股神经首先分出，然后再分离股动、静脉之间的结缔组织，注意勿损伤血管小分支。分离出股动脉段约2～3 cm备用。
2.股动脉、静脉的插管
其插管方法同颈总动脉、颈外静脉的插管。
如需要从股动脉放血、股静脉输血或注射药物等，也可在血管腔内插入一塑料插管，股动脉插管内先用20%枸橼酸钠溶液润湿，插管外接一段软质细胶管，便于放血。
六、心导管插管术
心导管插管技术的实际意义是测试心脏功能。它是医学基础实验和临床实验中应用较为广泛：
(一)右心导管插管技术
1.选择手术视野：在家兔下颌至锁骨上缘处范围内剪去动物被毛，用生理盐水纱布清理手术范围。
2.切开颈部皮肤：手持组织镊轻轻提引起两侧皮肤，沿距下颌2 cm至锁骨上1 cm处剪开皮肤约1 cm的小口后，用止血钳贴紧皮下向上钝性分离皮下筋膜3～4 cm，再用医用剪刀剪开皮肤。用同样的方法向下分离皮下筋膜、剪开皮肤3～4 cm，及时止血或结扎出血点。
3.暴露颈总静脉：轻轻提起左侧缘皮肤切口，在胸锁乳突肌外缘处可清晰见到颈总静脉的走向。沿血管走向用纹式止血钳钝性分离皮下筋膜，暴露颈总静脉3～5 cm。在靠近锁骨端用动脉夹夹闭近心端颈总静脉，在血管的远心端穿2－0手术线，待血管内血液充分充盈后用手术线结扎颈总静脉的远心端。
4.颈总静脉插管 测量切口到心脏的距离，并在心导管上作好标记，作为插入导管长度的参考。靠近远心端血管处用医用眼科剪呈45。角剪开血管直径的1/3，用弯型眼科组织镊的弯钩插入到血管内轻轻挑起血管，此时可见到颈总静脉血管腔，迅速插入心导管约2.5 cm后，在近心端结扎血管，放开动脉夹。注意：此时结扎血管的原则是既要保证血管切口处无渗血的现象，又要保证心导管可以继续顺利地插入。
5.心导管的插入 当将心导管插入到颈静脉时，需要平行地继续推送导管5～6 cm。此时会遇到(接触锁骨的)阻力，应将心导管提起呈45。的角度后退约0.5 cm，再继续插入导管至心导管上所作标记处，插管时出现一种“扑空”的感觉，表示心导管已进入到右心房。此时应借助监视器上图形的变化，证实心导管是否已进入右心房。
6.心导管的固定 在近心端处重新牢固地结扎血管。在远心端处将结扎血管的手术线再结扎到导管上，起到加固的作用。清理手术视野，缝合皮肤。
7.心导管位置的判断 将血压换能器与三通管连接好，并确认连接牢靠，然后打开三通管的阈门，依据计算机屏幕显示的图像和波幅的变化，区别心导管所处的位置。
(二)左心导管插管技术
1.固定动物 同右心导管插管技术。
2.术前准备 同右心管插管技术。
3.分离颈总动脉
(1)选择手术视野：同右心导管插管技术。
(2)切开颈部皮肤：同右心导管插管技术。
(3)颈总动脉分离(前面已介绍)
4.颈总动脉插管 在靠近远心端血管结扎处用左手拇指及中指拉住远心端线头，示指从血管背后轻托血管，右手持眼科直剪与血管呈45o角剪开血管直径的1/3。测量切口到心脏的距离，在心导管上作一标记作为插入导管距离的参考依据。用弯型眼科组织镊的弯钩插入到血管腔内轻轻挑起血管，此时可见到颈总动脉血管腔。右手持心导管与动脉平行地向心脏方向插入动脉内，插入心导管约2.5 cm后用手轻轻捏住血管切口部位，放开动脉夹，防止出血或渗血。
5.心导管的插入 操作者一手捏住血管切口处，另一手将心导管继续，平等地推送到预定部位。及时打开三通管阀门，保持心导管与血压换能器处于相通的状态。通过BL－410在计算机屏幕上可显示左室压力(LVP)被及其压力微分波(±dp/dt)波。当心导管到达主动脉入口处时，即可触及到脉搏搏动的感觉，继续推进心导管。若遇到较大阻力，切勿强行推入，此时可将心导管略微提起少许呈45o角，再顺势向前推进。如此数次可在主动脉瓣开放时使心导管进入心室。插管时出现一种“扑空”的感觉，表示心导管已进入到心室部位。同时，在计算机屏幕上也即可出现LVP及其±dp/dt。
6.心导管的固定 在近心端重新牢固地结扎血管。在远心端将结扎血管的手术线再结扎到导管上，起到加固的作用。清理手术视野，缝合皮肤。
7.心导管位置的判断 将血压换能器与三通道连接好，并确认连接牢靠，打开三通管的阀门，若心导管进入左心室，从生物信号记录系统的屏幕上可以看到LVP和±dp/dt曲线(图6－27)。
(四)注意事项
1.要求动物麻醉适度。麻醉过度易造成动物死亡，麻醉过浅常会因动物躁动而影响顺利插管。静脉麻醉时推药的速度要缓慢，随时观察动物生命体征变化，掌握宁少勿多、随时补充、缓慢注入的原则。
2.手术前注意心导管的肝素化，防止导管内的凝血。
3.分离血管动作要轻，不可盲目。严禁用剪刀等锐利器械分离血管，以防损伤血管。血管切口的大小一般占血管管径的1/3，切口过大容易造成血管断裂，切口过小导管不易插入。
4.心导管的尖端必须光滑，不宜制备得太尖，以免进行心导管插管时，刺破血管壁或插入管壁粘膜层中。
5.心导管的插入有若干步骤，必须按要求一步一步地完成。
6.进行右心导管插管手术时，必须轻柔地向心脏部位的方向缓慢插入，遇到阻力时需要退回或改变角度重插，切不可硬性插入导管(这样容易插破静脉进入胸腔)。直到达到导管上的距离标记，即说明心导管已达预定的部位。
7.心导管插管过程中，如果动物出现呼吸困难，应及时行气管切开手术，以便保证动物呼吸道的畅通，避免造成动物窒息死亡。如果动物出现心律失常，则要暂时停止手术，待恢复后再进行手术。
8.固定心导管插管是一个十分重要的步骤，不能有丝毫的马虎。否则将直接影响实验的结果。
9.术前调试好计算机软件，对协助心导管插管时位置的判断是十分重要的。应避免在心导管插管时再调试软件，这样会延误实验时间。
10.进行血压测量时应保持血压换能器与动物心脏呈水平状态，这样才能保证测量血压的准确性。
七、中心静脉压的测定
(一)动物准备
1、麻醉和固定：
家兔耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉（ 0.75－1g/kg体重）。
兔仰卧固定。
2、颈部手术和插管
(1)正中切开皮肤3－100px，分离皮下组织，找出并分离右侧颈外静脉。在其下方穿两条线，分别置于远心端、近心端备用。
(2)耳缘静脉注射肝素1000U/kg，进行全身抗凝。
(3)静脉导管接至换能器，并自三通注生理盐水排空换能压力仓和导管内的空气。
(4)用动脉夹夹闭右侧颈外静脉近心端，结扎其远心端。用静脉测定管量取结扎至右心房的距离并标记，并在插管上扎线的尾侧做斜形切口，用眼科镊扩张切口，将静脉导管插入静脉腔，松掉动脉夹，继续向心方向插入标记处，固定之。
(二)仪器连接与参数设置
1、YP－500型压力换能器依定标编号插入BL－410生物系统相应通道插口，固定于铁支架上，使之与动物右心房同一平面。
2、用鼠标双击桌面上的“BL－410”图标进入BL－NewCentury主界面，鼠标单击菜单项，弹出下拉式菜单，移动光标至已接换能器的“通道”，选定“压力”。单击工具条上的“开始”按钮，将选定通道的“增益”设为“200/div”，“时间常数”设为“DC”，“高频滤波”设为“30Hz”，将光标移至所选通道左缘的标尺单位显示区，单击鼠标右键，自快捷菜单选择“cm”为计量单位。
(三)观察指标
CVP波形及压力，选择适当的显速(以能清楚显示心搏波为宜)可清渐地观察静脉搏动曲线。在通用信息显示区可实时动态显示静脉压力数值，也可用鼠标单击工具条上的“暂停”按钮，移动光标测量某一时刻的静脉压。
(四)注意事项
颈部静脉的管壁比较簿，位于皮下，分离时小心，勿损伤之。
静脉导管尖端要光滑，插管时不可用力过猛，当导管插至锁骨下遇到阻力时可将导管稍稍后退，稍提起颈部皮肤再插入。
