目录

  • 1 第一单元
    • 1.1 实验一 特殊显微镜的使用
  • 2 第二单元
    • 2.1 实验二 DNA的细胞化学-孚尔根染色
  • 3 第三单元
    • 3.1 实验三 糖原的显示—PAS反应
  • 4 第四单元
    • 4.1 实验四 小鼠巨噬细胞吞噬的观察
  • 5 第五单元
    • 5.1 实验五  细胞核、叶绿体、线粒体的分级分离及观察
  • 6 第六单元
    • 6.1 实验六 细胞电泳
  • 7 第七单元
    • 7.1 实验七  线粒体的活体染色和观察
  • 8 第八单元
    • 8.1 实验八 细胞质膜通透性与水孔蛋白
  • 9 第九单元
    • 9.1 实验九 细胞内过氧化物酶的显示
  • 10 第十单元
    • 10.1 实验十 死活细胞的鉴定
  • 11 第十一单元
    • 11.1 实验十一 动物细胞培养技术
实验六 细胞电泳

实验六、细胞电泳

一、 实验目的

1、了解细胞电泳的原理和意义,学习细胞(包括细胞器)电泳速度及ξ电位的测定方法;

2、通过动物红细胞电泳现象的观察和电泳速度的测定实验,掌握细胞电泳技术的实验操作;

3、通过实验了解细胞电泳技术在研究生命科学中的重要作用。

二、实验原理

在外界附加电场作用下产生多相系统相位移效应,称为电动现象,属于此种电动现象的包括电泳和电渗透。

在电场作用下,液体介质中的悬浮质点与介质间的相对运动,称为电泳。将细胞制成悬浮溶液,使其单个游离的细胞分散于等渗的介质中,在电场作用下,细胞在电泳室内发生运动。这种现象称为细胞电泳。

每种细胞在恒定的条件下(如温度、电压、电流、介质浓度、pH值等),其电泳速度和ξ电位十分稳定,但在各种有害因子、病理状态的影响下,可降低其表面电荷,所以细胞电泳速度和ξ电位值发生改变(降低)。因此,利用细胞电泳研究生命结构的表面性质,鉴定细胞或单细胞有机体的机能和病理状态具有重要的意义。

静止层:

早已发现,在外加电场的作用下,处在两端封闭的毛细管中不同深度的各层微粒的泳动速度是不同的。这是因为微粒受到电泳和电渗两种因素作用的结果。

单纯的电泳通常使各层微粒以同一速度移向正极,电渗的情况却比较复杂。在外加电场的作用下,沿管壁的一层,以较高的速度流向负极,越是远离管壁,液层的流速越低。管的两端是封闭的,管内的液体流动总量为零。因此,在同一时间内,有多少液体沿管壁附近流向负极,就必然有同量液体流向正极。流速是逐层变化的,在两种流向之间,存在流速为零的一层,即为静止层。

处在静止层上的微粒,其移动速率才等于电泳率。在静止层附近,深度速度曲线的陡度很大,深度的微小偏离,将引起测定速度的较大误差。因此,准确地确定静止层,是显微电泳中一项最精细、最重要的工作。

断面长方形显微观察电泳槽的静止层在距显微观察电泳槽前壁的0.202D0.798D处(可根据上面介绍的方法求得)。

玻璃小室内部容积为:40×18×0.8mm, 0.58ml

玻璃小室由上下两块0.8mm的薄玻璃组合而成,上下两块玻璃内壁分别刻有不同方向的永久性条状标记线。玻璃小室外部有指示标签,按照标签即可在显微镜下寻找到内层上下的永久性标记。

玻璃小室的内层空间仅有0.8mm的高度,两端是开放的。在操作过程中应注意轻拿轻放,按压玻璃小室时应用手按压两边,而不要压在中间。两端留有一段可见的部分是为了观察液体及是否存留气泡。原则上加样时应加满,不能留有气泡。

玻璃小室的长度比固定架的电极块间距略长一些,为的是能紧密接触导电橡胶电极。

 

三、实验用材

SD-2型细胞电泳仪1台、光学显微镜1台、、细胞电泳架1个、5ml注射器1支。

氯化钠、蔗糖、肝素。

四、实验步骤

1、安放玻璃小室时应先将其一端对准一侧的胶块中间,用适当的力推压,将另一端的4/5留在胶块里,1/5露出在外,见图八、图九。然后用注射器针头插入玻璃小室的内部加样

2、加样时不应有液体渗漏,加样完毕不应有气泡存留

3、加样完毕将玻璃小室按平,插上电极,进行电泳。

4、按正确的方法取下玻璃小室,取下玻璃小室时不可直接向上用力,应该向外侧缓缓推出

 

五、作业

1、计算出红细胞电泳迁移的平均速率