动物生理

曹授俊

目录

  • 1 绪论
    • 1.1 一、动物生理学概念
    • 1.2 二、生命活动的基本特征
    • 1.3 三、生理学研究方法
    • 1.4 四、机体生理功能的调节
  • 2 第一章  细胞生理
    • 2.1 一、细胞膜的基本结构
    • 2.2 二、细胞膜的跨膜转运作用
    • 2.3 三、细胞膜的生物电功能
  • 3 第二章 血液生理
    • 3.1 第一节 血液的组成
    • 3.2 第二节 血细胞生理
    • 3.3 第三节  血液凝固与血型
  • 4 第三章 循环生理
    • 4.1 第一节 心脏的泵血功能
    • 4.2 第二节  血管生理
    • 4.3 第三节 心血管活动的调节
  • 5 第四章 呼吸生理
    • 5.1 第一节 肺  通  气
    • 5.2 第二节 气体交换
    • 5.3 第三节 气体运输
  • 6 第五章 消化生理
    • 6.1 第一节 消化吸收概述
    • 6.2 第二节 口腔消化
    • 6.3 第三节 单胃消化
    • 6.4 第四节 复胃消化
    • 6.5 第五节 小肠与大肠消化
    • 6.6 第六节 吸收
  • 7 第六章 体温调节
    • 7.1 体温
  • 8 第七章 泌尿生理
    • 8.1 第一节 肾脏的解剖和血流特点
    • 8.2 第二节 肾小球的滤过作用
    • 8.3 第三节    肾小管和集合管的重吸收与分泌作用
  • 9 第八章    神经生理
    • 9.1 第一节    神经元与神经胶质细胞
    • 9.2 第二节    神经元间的功能联系
    • 9.3 第三节    神经系统的感觉功能
    • 9.4 第四节    神经系统对躯体运动的调节
    • 9.5 第五节    神经系统对内脏活动的调节
    • 9.6 第六节    脑的高级神经活动
  • 10 第九章 内分泌生理
    • 10.1 第一节    概述
    • 10.2 第二节    内分泌腺分泌作用
  • 11 动物生理实验技术
    • 11.1 实验一 血涂片的制备与显微镜检查
    • 11.2 实验二  动物血液样品采集与处理
    • 11.3 实验三 ABO血型鉴定与交叉配血实验
    • 11.4 实验四 红细胞渗透性脆性实验
    • 11.5 实验五  红细胞计数
    • 11.6 实验六  白细胞计数
    • 11.7 实验七血细胞分类计数(全自动)
    • 11.8 实验八   蛙心活动的观察
    • 11.9 实验九 家畜体温测定
    • 11.10 实验十  人体动脉血压的测定和影响因素
    • 11.11 实验十一 动物呼吸运动、频率观察记录
    • 11.12 实验十二 反刍动物反刍观察分析
    • 11.13 实验十三  反射与反射弧的分析
    • 11.14 实验十四  蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备
    • 11.15 实验十五  出血时间和凝血时间的测定
  • 12 动物生理课程思政素材
    • 12.1 教学案例一:巴甫洛夫的工匠精神和奉献精神
    • 12.2 教学案例二:屠呦呦的科研专注和执着
    • 12.3 教学案例三:中国在新冠肺炎疫情防控和疫苗研发中的成就
    • 12.4 教学案例四:G蛋白偶联受体信号通路的解析
    • 12.5 教学案例五:孔婧捐赠造血干细胞的事迹
    • 12.6 教学案例六:3D打印技术在医疗领域的应用
    • 12.7 教学案例七:我国泌尿系统疾病患病率不断提高
实验十四  蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备


实验十四  蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备


学习目标

掌握坐骨神经--腓肠肌标本制备的方法。

学习要求

教学重点:学会观察和记录反刍动物反刍的频率的方法

教学难点:分析不同反刍动物反刍的特点,通过观察判定反刍动物的健康状态。

注意事项

1.掌握坐骨神经肺肠肌标本的制作方法, 要求制备好的标本兴奋性好。

2.在剥离标本时, 不能用金属器械触碰神经干。 神经周围的结缔组织一定要剥离干净, 同时要特别小心, 以防损伤和剪断神经。

3. 不能使蛙皮肤分泌物和血液沾污神经和肌肉, 也不能用自来水冲洗,以免影响组织的兴奋性。要随时用任氏液湿润神经和肌肉,以防干燥。

4. 结扎跟膛时,线应扎紧,以免滑脱。

5. 瞻酥对人体皮肤元害, 但对眼睛有一定的剌激作用。如果不慎溅人眼内, 可立即用生理盐水冲洗数次。 若发现眼睛红肿疼痛, 须及时去医院眼科处理。

实验操作

1.破坏脑脊髓

取一只青蛙用自来水冲洗干净,左手固定,右手持探针将探针由凹陷处刺入枕骨大孔,这时将探针端转向头端,向前刺入颅腔,然后探针向各方搅动,以捣毁脑髓。再将探针退出到皮下,再由枕骨大孔刺入,并转向尾方,刺入椎管,将探针上下抽动几次,以彻底破坏脊髓。

2. 剪除躯干上部及内脏:提起蛙的背部,在躯干前1/3 处剪断脊柱,仅留骶尾联合以下的后肢,骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。

3.剥皮:剥掉躯干及后肢的全部皮肤,放在预先用任氏液湿过的清洁的蛙板上。

4.分离两腿:沿脊髓正中线剪开脊椎,将剪开的脊椎连同神经分别放在左、右大腿肌肉下。然后在骨盆联合部剪开两腿,注意勿伤及神经

5. 制备坐骨神经排肠肌标本

分离坐骨神经:取一条已剥皮的蛙腿,用玻璃分针沿股二头肌及半膜肌所形成的肌沟剥离肌膜, 露出坐骨神经,仔细分离出坐骨神经。

6. 制备坐骨神经小腿标本:分股骨周围的大腿肌肉, 从膝关节减掉肌肉, 露出股骨, 在关节以上lcm处剪断股骨。

7. 制备坐骨神经排肠肌标本:在腓肠肌跟腱与肌肉交界处穿线结扎,剪下跟腱, 使腓肠肌与周围组织脱离, 直到膝关节为止,为坐骨神经--肠肌标本。

8. 检查标本

标本制作好后, 随即用钵铜弓蘸任氏液轻轻接触坐骨神经, 给以剌激,腓肠肌即能发生明显而又灵活的收缩,表示标本的兴奋性良好。