动物生理学实验

董守良 常民 唐晓龙 马明

目录

  • 1 第一章动物生理学实验概述
    • 1.1 动物生理学实验概述
    • 1.2 动物生理学实验室安全
    • 1.3 实验设计的要素与原则
    • 1.4 实验动物的选择原则
    • 1.5 实验动物伦理福利
    • 1.6 第一章 测验
  • 2 第二章动物生理学实验常用仪器及手术器械
    • 2.1 生理机能实验系统及常用传感器简介
    • 2.2 生理机能实验系统软件简介
    • 2.3 动物生理实验常用手术器械及使用方法
    • 2.4 打结与缝合
    • 2.5 实验室意外伤害处理
    • 2.6 第二章 测验
  • 3 第三章 不同刺激强度和频率对肌肉收缩的影响
    • 3.1 蟾蜍的捉拿和毁髓
    • 3.2 坐骨神经-腓肠肌标本的制备
    • 3.3 肌肉神经实验1(理论)
    • 3.4 肌肉神经实验1
    • 3.5 第三章 测验
  • 4 第四章 动作电位的引导及神经传导速度测定
    • 4.1 肌肉神经实验2(理论)
    • 4.2 肌肉神经实验2
    • 4.3 第四章 测验
  • 5 第五章 反射时与反射弧
    • 5.1 反射弧的分析和反射时的测定(理论)
    • 5.2 反射弧的分析和反射时的测定
    • 5.3 第五章测验
  • 6 第六章 蟾蜍心搏的描记、期外收缩与代偿间歇
    • 6.1 蟾蜍心脏实验1(理论)
    • 6.2 蟾蜍心脏实验1
    • 6.3 第六章测验
  • 7 第七章 蟾蜍心脏的神经支配及蛙心灌流
    • 7.1 蟾蜍心脏实验2(理论)
    • 7.2 心脏的神经支配
    • 7.3 蛙心灌流
    • 7.4 第七章测验
  • 8 第八章 蟾蜍心肌细胞动作电位
    • 8.1 蟾蜍心肌细胞动作电位的记录(理论)
    • 8.2 蟾蜍心肌细胞动作电位的记录
    • 8.3 第八章测验
  • 9 第九章 大鼠高血压模型的建立
    • 9.1 大鼠高血压模型的建立(理论)
    • 9.2 手术法建立大鼠高血压模型
    • 9.3 大、小鼠的基本操作
    • 9.4 打结与缝合的简介
    • 9.5 尾套法大鼠无创血压测量
    • 9.6 第九章测验
  • 10 第十章 大鼠脑立体定位
    • 10.1 大鼠脑立体定位术(理论)
    • 10.2 实验动物给药剂量的计算
    • 10.3 实验动物给药方法简介
    • 10.4 大鼠脑立体定位术
    • 10.5 第十章 测验
  • 11 第十一章 家兔的动脉血压
    • 11.1 家兔动脉血压的调节(理论)
    • 11.2 家兔的抓取、称重、麻醉和固定
    • 11.3 家兔颈部手术
    • 11.4 家兔动脉插管
    • 11.5 家兔动脉血压的神经体液调节
    • 11.6 家兔减压神经放电的记录
    • 11.7 第十一章测验
  • 12 第十二章 家兔呼吸运动的调节
    • 12.1 影响家兔呼吸的因素(理论)
    • 12.2 家兔呼吸运动的调节
    • 12.3 第十二章测验
  • 13 第十三章 家兔泌尿实验
    • 13.1 尿生成的调节(理论)
    • 13.2 家兔尿的生成
    • 13.3 第十三章测验
  • 14 第十四章 镇痛药效的测试方法
    • 14.1 镇痛药效的测试方法(理论)
    • 14.2 实验动物的编号和标记
    • 14.3 镇痛药物药效实验方法
    • 14.4 第十四章测验
  • 15 第十五章 小肠的生理特性
    • 15.1 小鼠离体小肠的生理特性(理论)
    • 15.2 小鼠离体小肠的生理特性
    • 15.3 第十五章测验
  • 16 第十六章小鼠学习记忆实验(水迷宫)
    • 16.1 小鼠学习记忆实验(理论)
    • 16.2 水迷宫介绍
    • 16.3 第十六章测验
  • 17 第十七章 小鼠焦虑抑郁实验(高架十字迷宫)
    • 17.1 小鼠焦虑抑郁实验(理论)
    • 17.2 高架十字迷宫介绍
    • 17.3 第十七章测验
  • 18 第十八章 动物代谢率的测定与分析(虚拟仿真实验)
    • 18.1 什么是代谢率
    • 18.2 动物代谢率的测定虚拟仿真实验
蟾蜍的捉拿和毁髓