目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
常用动物取血法

(一)小鼠和大鼠

1.尾尖取血:将鼠装入固定盒内,露出尾部,用45-50度温水浸泡或用二甲苯擦拭鼠尾使血管扩张,在取血部位涂上凡士林,用手术刀片切开(斜切)左或右侧静脉,血液即自行流出。取血后用棉球压迫止血或用6%液体火绵胶涂与伤口外。也可采用剪除尾尖法取血(因尾尖部有静脉丛,故不可剪去太多)。

2.球后静脉丛取血:用一根长约15cm的细玻璃管一端烧制拉成直径为1.0-1.5mm的毛细管,临用前浸入1%的肝素溶液里,取出干燥后待用。取血时左手捏住鼠两耳间的颈背部头皮轻轻向下压迫颈背部两侧,以阻断头部静脉回流而使眼球外突。右手持毛细管,从眼睑与眼球插入,使毛细管与眶壁平行地向喉头方向推进4-5mm,即达到球后静脉丛,血液会自行流入管内。小鼠一次可取血0.2ml,大鼠可取0.5ml,此法可连续取血多次。

3.眶动静脉取血:将鼠倒持压迫眼球,使其充血后突出,用止血钳迅速摘除眼球后,眼眶内很快有血液流出,将血滴入有加抗凝剂的试管里即可。

4.心脏取血:左手捏住鼠颈部及背部皮肤或抑制于固定板上,右手持注射器,在心尖搏动最明显处(左侧胸第3-4肋间)刺入心室,抽出血液。

5.断头取血:取血时抓住鼠身,用剪刀剪掉头部,立即将鼠颈部向下,并对准已准备好的试管(内放抗凝剂)使血快速滴入试管内。

     (二)兔

1.耳缘静脉取血:用小血管动脉夹夹住耳根部,在取血部位局部涂二甲苯,使血管扩张,后用酒精擦净,再用粗针头刺破入耳缘静脉,拔除针头血即流出取血或用刀片切开也可以,此法方便,且可反复取血。

2.颈外静脉取血:须做颈外静脉分离手术,术后将注射针头由近心端向远心端方向刺入,使针达至颈外静脉分叉处即可取血。

3.颈动、静脉取血:先做颈动、静脉暴露手术,把其分离出约2~3cm,并在其下穿两条线,用一条结扎远心端,(颈静脉结扎近心端)使血管充盈。近心端以小动脉夹夹闭,用眼科剪刀向近心端剪一V型切口,插入动脉插管结扎紧固,取血时打开动脉夹即可(动物体内可注射肝素抗凝)。

4.心脏取血:将兔仰卧固定。在左第三肋间胸骨左缘3mm处把针头垂直刺入心脏,血液即进入针管。