目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
肺功能测量

目的和原理】肺通气(pulmonary ventilation)是指肺与外界环境之间进行气体交换的过程。实现肺通气的结构包括呼吸道、肺泡和胸廓等。呼吸道是肺通气时气体进出肺的通道,同时还具有加温、加湿、过滤和清洁的吸入气体以及引起防御反射灯保护作用。肺容积、肺容量以及肺通气量是反映进出肺的气体量的一些指标,除残气量和功能残气量外,其他的气体量都可以用肺量计直接记录。本实验就是要掌握肺功能检测的方法和了解各项肺功能指标的生理意义。

一、肺容积的测定

实验对象

实验器材

Webchart-400生物机能实验系统和人体肺通气换能器。

实验步骤和观察项目

1.仪器连接:BL-420S接上电源,以USB线与计算机连接,将肺通气换能器与BL-420S第一通道连接。

2.受试者放松坐好,点击开始按钮进行实验。让受试者先对肺通气换能器吹一次气,查看波形在吹气时是否向下,如果没有,则翻转换能器,在另一个流速侦测口上接吹气口。

3.受试者手持肺通气换能器吹气口,戴上鼻夹,经由吹气口正常呼吸。

4.受试者正常呼吸1min,后让受试者进行35次深呼吸,注意要尽可能的吸尽呼尽气体。此时稍稍等待几秒,让受试者除去吹气口,点击停止按钮停止实验。

5.测量:

1)测量潮气量(tidal volume ,TV):点击波形控件右上角潮气量按钮,然后选定一段较为稳定的波形,松开鼠标,这时按钮下方就会出现要测量的潮气量数值,将数据记录至下方表格中。

2)测量补吸气量(inspiratory reserve volumeIRV)、补呼气量(expiratory reserve volumeERV):点击波形控件右上角补气量按钮,然后选定深呼吸时的波形,松开鼠标即可得到要测量的数据。

6.计算深吸气量(inspiratory capacityIC):IC=TV+IRV,计算肺活量(vitalcapacityVC):VC=IC+ERV,记录结果。

二、时间肺活量的测定

实验对象

实验器材

Webchart-400生物机能实验系统和人体肺通气换能器。

实验步骤和观察项目

1.受试者安静坐好,点击开始按钮进行实验。

2.让受试者经由肺通气换能器吹气口正常呼吸10s左右,然后尽最大能力深吸气,在吸气末尽力尽快呼出所有气体。注意要戴上鼻夹。

3.在尽力呼气的波形上按时间先后添加如下注释:第一秒呼气末、第二秒呼气末、第三秒呼气末。

4.受试者再恢复正常呼吸数次后,除去吹气口,点击停止按钮停止实验。

5.测量:

1)测量用力肺活量(forced vital capacityFVC)、1s用力呼气量(FEV1)、第2s用力呼气量(FEV2)、第3s用力呼气量(FEV3):点击波形控件右上角时间肺活量按钮,然后选定做深、快呼气时的波形,松开鼠标即可得到要测量的数据,记录数据。

2)计算FEV1百分比:FEV1%=FEV1/FVC×100%,记录结果。

3)计算FEV2百分比:FEV2%=FEV2/FVC×100%,记录结果。

4)计算FEV3百分比:FEV3%=FEV3/FVC×100%,记录结果。

三、肺通气量的测定

实验对象

实验器材

Webchart-400生物机能实验系统和人体肺通气换能器。

实验步骤和观察项目

1.受试者安静坐好,点击开始按钮进行实验。

2.让受试者经由肺通气换能器吹气口正常呼吸1min,注意要戴上鼻夹。

3.此时添加注释:最大随意通气量,然后让受试者尽可能深和快的呼吸10s

4.让受试者再恢复正常呼吸数次后,除去吹气口,点击停止按钮停止实验。

5.测量:

1)测量呼吸频率、肺通气量(pulmonary ventialationPV):点击波形控件右上角肺通气量按钮,然后选定一段正常呼吸时较为稳定的波形,松开鼠标即可得到数据,将数据记录至下方表格中。肺通气量=潮气量*呼吸频率,即每分钟内呼入或呼出的气体总量。

2)测量最大随意通气量(maximal voluntary ventilationMVV):点击波形控件右上角“MVV”按钮,然后选定做深、快呼吸的波形,松开鼠标即可得到数据记录数据。MVV=深快呼吸气量×深快呼吸频率,即每分钟所能吸入或呼出的最大气体量。

3)计算通气贮量百分比:通气贮量百分比=(最大随意通气量肺通气量)/最大随意通气量×100%

注意事项

1.呼吸道感染者请勿作为受试对象

2.仪器密闭性要良好。

思考题

1.观察肺活量和用力肺活量,比较它们之间的数值,说明了什么?为什么?

2.观察FEV1%FEV2%FEV3%,发现了什么?假如是一个患有肺阻塞性疾病的病人呢?

3.运动员的肺活量和最大随意通气量比较如何?为什么?