目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备

蛙类动物的一些基本生命活动和生理功能与哺乳动物有相似之处,且维持其离体组织正常活动所需要的理化条件比较简单,易于模拟和控制。因此,在机能学实验中常用蟾蜍或蛙的标本来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激与肌肉收缩的一些规律和特点等。制备坐骨神经-腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。

1.破坏脑和脊髓  取一只蟾蜍,用自来水冲洗干净。用左手的中指和无名指夹住蟾蜍的前肢,躯干和后肢握在手里,拇指前推、食指压住头部前端使头前俯。右手持探针自枕骨大孔垂直刺入,左右划动横断脑和脊髓。接着将探针向前刺入颅腔,左右搅动充分捣毁脑组织。然后将探针沿原路撤回至进针点(不要拔出),转向后刺入椎管,反复上下提插、捻动充分捣毁脊髓。此时如蟾蜍的呼吸停止、四肢松软,表明脑和脊髓已完全破坏,否则重复上述操作再行捣毁。

2.剪除躯干上部和内脏  蟾蜍脊柱有一明显变宽处为蟾蜍的骶髂关节。在骶髂关节水平以上1.52.0cm处剪断脊柱,再沿后段脊柱侧面剪开两侧皮肤,此时蟾蜍的躯干上部和内脏自然下垂,用粗剪刀剪除躯干上部和内脏,仅留下后肢、骶骨、脊柱以及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经丛

3.剥皮  左手持大镊子夹住脊柱断端,右手捏住其上皮肤的边缘,向下剥掉全部后肢的皮肤。然后将标本放在盛有任氏液的培养皿中。  

4.洗手和全部用过的手术器械。  

5.分离左右后肢  用大镊子夹住脊柱断端将标本背面向上,脊柱呈水平提起,剪除向上突起的骶尾骨,然后将标本翻过来腹面向上,沿正中线将脊柱剪为两半,并于耻骨联合中央剪开两侧大腿。标本放回盛有任氏液的培养皿中。   

6.制备坐骨神经-腓肠肌标本

1)游离坐骨神经  在蛙板上铺一块纱布并滴上少许任氏液。取一侧后肢腹面向上放于蛙板上,用玻璃分针沿脊柱侧游离坐骨神经丛。然后将标本背面向上,循坐骨神经沟(股二头肌和半膜肌之间的肌间沟)游离坐骨神经大腿部至腘窝,剪断坐骨神经的所有分支。保留约1cm长与坐骨神经相连的脊柱后剪断脊柱,将游离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上。

2)完成坐骨神经-小腿标本  在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉并用普通剪刀将股骨刮干净,然后在膝关节上1.5 cm处剪断股骨,剩下的部分就是坐骨神经-小腿标本。

3)完成坐骨神经-腓肠肌标本  在坐骨神经-小腿标本的跟腱下方穿线结扎,于结扎线远端剪断跟腱,游离腓肠肌至膝关节处,然后沿膝关节腔将小腿其余部分剪掉,最后剩下的就是坐骨神经-腓肠肌标本。