目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
动物急救和安死术

(一)实验动物的急救措施  

当实验动物因麻醉过量、大失血、创伤、窒息等原因,使动物发生动脉血压快速下降、呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时,应立即急救。

1.注射强心剂:家兔等可静脉注射0.1%肾上腺素1ml,必要时直接做心内注射。

2.注射呼吸中枢兴奋剂:静脉注射25%尼可刹米1ml,或1%山梗菜碱0.5ml

3.快速注射高渗葡萄糖液:可动脉注射40%葡萄糖,2~3ml/kg

4.快速输血、输液:可动脉、静脉加压输血或低分子右旋糖酐。

5.人工呼吸:可采用双手压迫动物胸廓进行人工呼吸,或行气管插管进行动物呼吸机呼吸。

(二)实验动物安死术

安死术是指以人道的方法处死动物的过程。在处死动物的过程中减少动物的惊恐或焦虑,安静地、无痛苦地死亡。

    安死术的常用方法

    1.颈椎脱位法  常用于大鼠和小鼠,右手抓住小鼠尾巴,将小鼠放在实验台上,左手按住小鼠头颈部,右手用力向后上方拉尾,感觉小鼠脊柱断开,小鼠便立即死亡。

    2.断头法  实验者戴上棉纱手套,用右手握住大鼠头部,左手握住背部,露出颈部,助手用剪刀在鼠颈部将鼠头迅速剪掉。

    3.空气栓塞法  常用于犬、猫、兔、豚鼠,向动物静脉内注入一定量的空气,使之发生栓塞而死。当空气注入静脉后,可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状,随血液循环到全身。如进入肺动脉,可阻塞其分支,进入心脏冠状动脉,造成冠状动脉阻塞,发生严重的血液循环障碍,动物很快致死。一般兔、猫等静脉内注入20~40ml空气即可致死。每条犬由前肢或后肢皮下静脉注入80~150ml空气,可很快致死。

    4.急性失血法  大鼠和小鼠可采用眼眶动脉和静脉急性大量失血方法使鼠立即死亡。家兔可采用颈动脉急性大量失血方法使家兔立即死亡。犬可先轻度麻醉,可按每千克体重静脉注射硫喷妥钠20~30mg,动物即很快入睡。暴露股三角区,用锋利的杀犬刀在股三角区做一个约250px的横切口,把股动、静脉全切断,立即喷出血液。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块,同时不断地用自来水冲洗流血,使股动脉切口处保持畅通,动物在3~5分钟内即可致死。

    5.化学致死法  将动物装笼后放入透明塑料袋内,封好,慢慢充入二氧化碳,动物很快死亡。静脉内注入一定量的氯化钾溶液,使动物心肌失去收缩能力,心脏急性扩张,致心脏迟缓性停跳而死亡,10%氯化钾家兔耳缘静脉注入5~10ml,犬前肢或后肢下静脉注入20~30ml,即刻动物发生死亡。

    6.药物麻醉法  适用于大鼠、小鼠和家兔等。将大鼠或小鼠放进浸透乙醚的密闭的容器内,盖紧,数分钟后动物因麻醉过度而死亡;也可给大鼠、小鼠、豚鼠和家兔腹腔注射戊巴比妥(90mg/kg),动物很快死亡。