目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
动物麻醉方法

麻醉(anesthesia)可分为全身麻醉和局部麻醉两大类。全身麻醉又可分吸入麻醉和注射麻醉两种,其中以注射麻醉较为常用。

(一)麻醉药物的选择

注射麻醉常以巴比妥和氨基甲酸乙酯应用较多。此外还常用氯醛糖和氯醛糖乌拉坦合剂。注射麻醉多采用静脉注射和腹腔注射给药。腹腔注射麻醉虽简便易行,但麻醉作用发生慢而兴奋现象明显,麻醉程度也不易控制。静脉注射麻醉作用发生快,而且没有明显的兴奋期,麻醉立刻生效。静脉麻醉操作时,应先缓慢注射麻醉药总量的3/4左右,以判断麻醉的深浅。首先观察瞳孔缩小程度是否达到原有的1/4,肌肉松弛,呼吸缓慢及角膜反射迟钝等反应,表明麻醉药物已经足量。常用麻醉药物的用法及剂量见表1-6

1-6 常用实验麻醉药物的用法及剂量

                                                                                                    

 

药物(常用浓度)

 
 

动物

 
 

给药途径

 
 

剂量(mg/kg

 
 

持续时间(h

 
 

戊巴比妥钠

 

1%-5%

 

Sodium Pentobarbital

 
 

兔、猫、狗

 
 

ivipih

 
 

3040-5050

 
 

2-4h,中途加1/5量,可维持1h以上麻醉力强,易抑制呼吸,对心血管系统也有复杂影响。

 
 

豚鼠

 
 

ip

 
 

45

 
 

大鼠

 

小鼠

 
 

ip

 

ip

 
 

45

 

45

 
 

硫喷妥纳(5%

 

Sodium Pentothal

 
 

兔、大鼠

 
 

ipiv

 
 

30-50

 
 

15-30min,麻醉力强,易抑制呼吸需缓慢注射,适合短程实验。

 
 

猫、狗

 
 

ipiv

 
 

20-30

 
 

乌拉坦(20%

 

Urethane

 
 

 

 

2000

 
 

2-4h,对呼吸和神经反射影响小,但可降低血压。

 
 

大鼠、小鼠

 
 

ipiv

 
 

1300

 
 

兔、猫

 
 

ipiv

 
 

900-1000

 
 

氯醛糖2%

 

Choralose

 
 

大鼠

 
 

ipiv

 
 

80

 
 

3-4h,诱导期不明显肌松不全。

 
 

兔、猫

 
 

ipiv

 
 

80

 
 

乌氯合剂

 
 

兔、猫

 
 

ipiv

 
 

750 75

 
 

5-6h

 
 

大鼠

 
 

ip

 
 

750 75

 

 

吸入麻醉的用药通常为乙醚(ether),吸附在棉球上放入玻璃罩内,利用其挥发性,经呼吸道进入肺泡,对动物进行麻醉。适用短时间手术过程和实验麻醉的各种动物。局部麻醉常用1%-2%盐酸普鲁卡因溶液,在手术部位作用下浸润麻醉,注射量按所需要的麻醉范围而定。

(一)静脉麻醉

家兔一般采用耳缘静脉注射麻醉:首先拔去耳缘静脉注射部位的被毛,用手指弹动或轻揉兔耳,使静脉充盈,左手食指和中指夹住静脉近端,拇指绷紧静脉远端,无名指及小指垫在下面,右手持6号针头从远端刺入,将20%乌拉坦(5ml/kg)缓慢注入,拔出针头,压迫针眼片刻即可。

(二)腹腔麻醉

小鼠、大鼠等动物常用腹腔注射麻醉。可选用麻醉药物包括戊巴比妥、水合氯醛等。左手固定动物,使腹部向上,头呈低位使内脏移向上腹。右手将注射器针头于右下腹部刺入皮肤。并以45度角穿过腹肌,缓慢注入药液。小鼠一次可注射0.1~0.2ml/10g体重,大鼠腹腔注射不超过2ml为宜。

(三)吸入麻醉

在某些实验中,可选用乙醚吸入麻醉方法。可将滴有乙醚的棉团放入麻醉缸或倒扣的烧杯中,将小鼠或大鼠放入,待其吸入乙醚麻醉后,可迅速拿出进行实验。必须注意的是,乙醚极易燃烧爆炸,使用场合不可有开放火焰或电火花。

(四)局部麻醉

在动物手术术野皮下,用1%普鲁卡因做局部浸润麻醉。

(五)麻醉异常情况急救

机能学实验常需在动物麻醉状态下检测各种指标,不同的动物个体对麻醉药的耐受性是不同的。因此,在麻醉过程中必须密切注意动物的状态。最易观察到的是呼吸频率,如果出现慢而不规则的呼吸,说明麻醉已过量,需给予小剂量的尼可刹米(可拉明)2-5mg/kg。出现呼吸停止但仍有心跳时,说明麻醉过深,此时首要的处理措施是立刻进行人工呼吸,给苏醒剂咖啡因1mg/kg、尼可刹米2-5mg/kg、山梗菜碱(洛贝林)0.3-1mg/kg进行处理。心跳停止时应进行心脏按摩,注射温热生理盐水和肾上腺素或心内注射1:1000肾上腺素1ml