目录

  • 1 实验机能学概述
    • 1.1 实验机能学性质、任务第一版
    • 1.2 实验机能学研究方法
    • 1.3 实验机能学的教学目的、内容和要求
    • 1.4 实验分组与人员分工
    • 1.5 实验资料的收集、记录方法
    • 1.6 实验课评价标准
    • 1.7 实验室安全
    • 1.8 学习方法
    • 1.9 科学与人文
  • 2 生物信号的采集与处理
    • 2.1 生物信号
    • 2.2 BL-420N 生物信号采集处理系统
  • 3 常用实验动物
    • 3.1 常用实验动物种类
    • 3.2 常用实验动物的选择
    • 3.3 善待实验动物
  • 4 常用手术器械及手术基本操作
    • 4.1 常用手术器械
    • 4.2 动物手术基本操作
      • 4.2.1 手术部位剪毛
      • 4.2.2 皮肤切口
      • 4.2.3 打结
      • 4.2.4 颈部组织暴露与分离
      • 4.2.5 颈外静脉插管
      • 4.2.6 气管插管
      • 4.2.7 颈总动脉插管
      • 4.2.8 开颅术
      • 4.2.9 离体肠管制备
      • 4.2.10 膀胱插管
      • 4.2.11 肝大部切除
  • 5 动物实验常用技术
    • 5.1 常用动物捉持法
    • 5.2 常用动物给药法
      • 5.2.1 经口给药法
      • 5.2.2 注射给药法
    • 5.3 动物麻醉方法
    • 5.4 常用动物取血法
    • 5.5 动物心电描记
    • 5.6 动物性周期检查
    • 5.7 动物急救和安死术
  • 6 常用动物实验标本制备
    • 6.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
    • 6.2 蛙坐骨神经-胫腓神经标本制备
    • 6.3 离体蛙心插管制备
  • 7 常用试剂药物配制
    • 7.1 常用生理盐溶液配制
    • 7.2 常用抗凝剂配制
    • 7.3 药物剂量的换算与配制
  • 8 实验设计
    • 8.1 立题
    • 8.2 实验设计
  • 9 动物机能学实验
    • 9.1 室性早搏的产生
    • 9.2 骨骼肌兴奋与兴奋收缩脱偶联
    • 9.3 神经干动作电位传导速度测定与神经损伤
    • 9.4 生理性止血及影响血液凝固的因素
    • 9.5 高钾血症及其治疗
    • 9.6 筒箭毒碱对神经动作电位及肌电活动的影响
    • 9.7 镇痛药、抗惊厥药物的作用
    • 9.8 肝药酶对药物作用的影响
    • 9.9 二室模型药物代谢动力学参数测定
    • 9.10 药物的安全性评价
    • 9.11 影响药物作用的因素
    • 9.12 有机磷酸酯类药物中毒与解救
    • 9.13 心律失常的表现与治疗
    • 9.14 各种离子和药物对离体心脏活动的影响
    • 9.15 急性中等量失血性休克的表现与抢救
    • 9.16 药物对血压的影响及其受体机制分析
    • 9.17 急性呼吸功能不全的表现与急救
    • 9.18 消化道平滑肌的收缩
    • 9.19 肝性脑病
    • 9.20 影响尿生成的因素及利尿剂的应用
    • 9.21 急性肾功能衰竭
    • 9.22 水肿与利尿药的作用
    • 9.23 酸碱平衡紊乱
    • 9.24 缺氧
    • 9.25 中枢神经系统损伤
    • 9.26 尾核神经元单位放电
    • 9.27 吗啡对大鼠大脑皮层诱发电位的影响
    • 9.28 氟哌啶醇对椎体外系的影响及东莨菪碱的对抗作用
    • 9.29 海马神经元单通道电流记录
    • 9.30 海马脑片椎体神经细胞离子通道电流记录
  • 10 人体机能学实验
    • 10.1 心音听诊与心音图描记
    • 10.2 动脉血压测量
    • 10.3 心电图描记
    • 10.4 肺功能测量
    • 10.5 运动对血压、心率和呼吸的影响
    • 10.6 肌电图描记
    • 10.7 脑电图描记
    • 10.8 视野的测定
    • 10.9 视力的测定
    • 10.10 色盲的检查
    • 10.11 视深度的测定
    • 10.12 视觉反射
    • 10.13 眼电图描记
  • 11 虚拟仿真实验
    • 11.1 医学虚拟仿真中心
  • 12 创新设计性实验的设计与实施
    • 12.1 选题与设计
    • 12.2 实验研究
常用实验动物的选择

实验动物应选择进化程度与人类相近,在遗传和净化控制下与实验所需相匹配的,生理解剖特点符合实验要求,实验结果可以推论到人的实验动物。动物实验不宜采用处于特殊生理状态(如妊娠、哺乳等)动物。动物的健康状况直接影响实验结果,应选择健康动物用于实验研究。急性实验可选用微生物控制级别较低但无疾病的实验动物,慢性试验应选用级别较高的实验动物。在实验研究中如无特殊要求,一般宜采用雌雄各半,以避免由性别差异造成的误差。

在选择动物时,同批实验的动物年龄尽可能一致,体重应大致相近。一般选择成年动物:小鼠 18~22g,大鼠180~220g,豚鼠 350~650g,家兔2~3kg。慢性实验应选用未成年实验动物:小鼠 15~18g,大鼠80~100g,豚鼠 150~180g,家兔 1.5~1.8kg

实验动物的种属不同,对于同一刺激物或致病因素的反应也不相同。例如,动物对致敏物质的反应程度的强弱大致为:豚鼠>家兔>>小白鼠>>蛙;吗啡对大鼠、兔、狗的作用是抑制性的,对小鼠猫的作用是兴奋性的,等等。因此,实验机能学教学采用何种动物,是决定实验研究成功与否的关键因素之一。

    转基因动物的应用。通过实验手段将新的遗传物质导入到动物胚细胞中,并能稳定遗传,由此获得的动物称为转基因动物。遗传的基本物质是DNA。基因则是位于染色体上有遗传效应的DNA片段,对于储存在生物全套染色体中的全部遗传信息称为基因组。由于不同种类、不同个体的生物基因组成是不同的,因此对动物个体来说,非自身的基因成分属于外源基因,若将外源基因整合或导入动物染色体基因中,则此外源基因就被称为转基因(transgene)(即转移来的基因),这种动物称为转基因动物(transgenicanimals)。转基因动物表达系统包括外源基因、表达载体和受体细胞等,基因组的转移可通过细胞核移植和动物克隆技术,也可利用合成生物学进行人工合成与设计基因、全基因乃至基因组转基因技术。